PROYECTO CULTIVO IN VITRO EN FIQUE
INDICE
INTRODUCCION
1. PROBLEMA
1.1 DESCRIPCION
DEL PROBLEMA
1.2 DELIMITACION
DEL PROBLEMA
1.3 FORMULACION
DEL PREBLEMA
2. JUSTIFICACION
3. OBJETIVOS
3.1 GENERAL
3.2 ESPECIFICO
4. MARCO
REFERENCIAL
4.1 LOCALIZACION
4.2 ANTECEDENTES
4.3 MARCO TEORICO
4.4 MARCO LEGAL
5. METODOLOGIA
6. REPUESTA ESPERADA
7. BIBLIOGRAFIA
INTRODUCCION
Los cultivo in vitro son estrategias tecnológicas para
la producción y rentabilidad,El cultivo de
tejidos vegetales o cultivo in
vitro de tejidos vegetales,
es una técnica de reproducción en condiciones totalmente asépticas, en la que a
partir de un pequeño segmento inicial de tejido es posible regenerar en poco
tiempo miles o millones de plantas genéticamente iguales a la planta madre,
cuando a este tejido le es aplicado un estímulo por medio de variables físicas
y químicas controladas en un medio de cultivo[1].A
partir de los avances alcanzados en la regeneración de plantas in vitro se ha
desarrollado toda industria de micro propagación que se inicio en los países
desarrollados de Europa y Norteamérica, que en la actualidad se ha extendido al
resto del mundo, incluyendo países de América Latina, Asia y África[2].
Los cultivos en in vitro se pueden realizar en árboles frutales.
Orquídeas. Plántulas de jardín.
PROBLEMA
El desconocimiento que se tiene acerca de los cultivos
in vitro,una estrategia de mejoramiento de productos agrícolas.
DESCRIPCION DEL PROBLEMA: existes comunidades que no
tienes conocimiento ni manejan las tecnologías como son los cultivo in vitro.
DELIMITACION DEL PROBLEMA: aprender y conocer el adecuado manejo que se lleva
para la producción de in vitro en planta
de fique.
FORMULACION DEL PROBLEMA:¿es el cultivo in vitro una
estrategia para mejorar la producción en fique?
JUSTIFICACION:
En los cultivos de fique se necesita encontrar un
sistema de producción que nos garantice plántulas de buena calidad y conocer nuevas
tecnología para producción como son los
cultivos in vitro una estrategia para obtener plantas de buena calidad.
OBJETIVOS
OBJETIVO GENERAL:
Conocer fundamentos, teorías y técnicas del cultivo de vegetales in
vitro para producir plántulas de fique como una estrategia de producción.
OBJETIVOS ESPECIFICOS:
·
Documentar el modulo de producción in vitro con
trasferencias tecnológicas para mejorar la producción de fique.
·
Generar plántulas de fique a partir de una proceso de
cultivo in vitro.
MARCO REFERENCIAL
LOCALICACION:
COLOMBIA: El
país es la cuarta nación en extensión territorial de América del Sur y, con
alrededor de 47 millones de habitantes.
CAUCA: unos de los departamentos de
Colombia, con gran diversidad de especies, pero muchas de ellas están en vía de
extinción.
POPAYAN: capital del departamento del
Cauca.
UNICOMFACAUCA: La Institución Universitaria Tecnológica de Comfacauca
tiene como misión contribuir a la formación de personas emprendedoras, con
calidad humana y alta competencia e impulsar la tecnología y la productividad
LABORATORIO
BIOTECNOLOGIA: El Laboratorio de Biotecnología
se ha desarrollado micro propagación in Vitro del cultivo con el objetivo de proveer de material de alta
producción, libre de insectos y enfermedades en cualquier época del año.
PROGRAMA AGROAMBIENTAL:
carrera tecnológica de la Institución Universitaria de Comfacauca.
ANTECEDESTES:
En octubre de 1994, se inicio la operación de un
laboratorio de tejidos vegetales in vitro, en el colegio profesional de biólogos del estado de varacruz, con la
finalidad de desarrollar técnicas para la propagación de especies vegetales de
interés ecológico y económico [3] en
enero d e199, se iniciaron las labores de siembra de tejidos en especies
ornamentales de interés económico en la región. A la par de estas actividades,
se ha hecho promoción del proyecto en los
medios de comunicación locales con el fin de dar a conocer al público
las ventajas de utilizar la técnica mencionada para la propagación de plantas
ornamentales difíciles de obtener por
los métodos tradicionales. Se han dado prácticas a estudiantes de la facultad
de biología y agronomía.
La mayoría de los trabajos en esta área se refiere al cultivo y propagación
in vitro de algunas especies del género. La regeneración in vitro se ha
alcanzado a través de la obtención de brotes a partir de meristemos auxilares
localizados en el segmento basal de las plantas, o bien a través
De organogénesis o embriogénesis somática indirecta, es decir, a partir
de tejido calloso generado también in vitro. En el Cuadro 1 se resumen los
trabajos más destacados en el área. En general, todos los antecedentes confirman
que la Biotecnología puede ser el método más eficiente
Para la propagación de plantas de agave con fines de producción masiva o
establecimiento de plantaciones [4]
MARCO TEORICO:
El término genérico “cultivo de
tejidos vegetales” involucra a diferentes técnicas de cultivo de material vegetal
diverso, incluyendo a los protoplastos (células desprovistas de su pared
celular), células, tejidos, órganos y
plantas completas. Mediante éstas y otras técnicas de cultivo, es posible
obtener plantas libres de microbios en un medio nutritivo aséptico (estéril) en
condiciones ambientales controladas. También se lo conoce como “cultivo in
vitro de plantas” por realizarse en recipientes de vidrio.
VENTAJAS:
- Permite obtener plantas libres de enfermedades (hongos, bacterias,
micoplasmas, virus y tiroides).
- La micro propagación vegetal nos permite propagar masivamente
material vegetal ano en cualquier época del año y en corto tiempo
conservando su potencial genético y calidad sanitaria.
- Permite optimizar el uso de factores ambientales y nutricionales.
- Facilita el cultivo de un gran número de plantas en una superficie
pequeña.
- Puede conservar material biológico por periodo de tiempo
prolongados.
- Además mediante este método de propagación se puede e puede incluir
aspectos de fitomejoramiento.
DESVENTAJAS:
El
cultivo in vitro es muy caro, entre otras cosa porque no se puede mecanizar.
Solo son rentables aquellos laboratorios
muy grandes y con mucho mercado.
La planta ya desarrollada en el cultivo in vitro
necesita una primera aclimatación en el laboratorio; en el invernadero y
después una segunda aclimatación en el campo. Los viveros grandes realizan
ambas operaciones; otros sólo se encargan del primer paso.
Aplicaciones
prácticas del cultivo in vitro:
- Propagación
vegetativa. Esto es lo más práctico. Dos técnicas:
- Micro propagación de estaquillas
- Organogénesis de callos - Producción de plantas
libres de virus mediante dos técnicas:
- Cultivo de meristemos
- Microinjerto in vitro - Permite
hacer germinar semillas que son muy difícil de hacer en condiciones
normales. Ejemplo: algunas Orquídeas tienen en los campos unos parásitos
obligados y en viveros no se pueden reproducir; se inoculan esos parásitos
o in vitro.
- Eliminar
la inhibición de germinación de las semillas. El cultivo in vitro es lo
más eficaz porque tiene determinados inhibidores y algunos huesos de
frutales no son capaces de germinar ya que no tiene desarrollado el
embrión.
- Prevención
del aborto embrionario como resultado de incompatibilidad. Se da en cruces
de interés científico o integranticos, sobre todo en plantas herbáceas.
Los cruces incompatibles dan abortos.
- Aplicación
en mejora genética para obtener híbridos, para introducir material
genético, etc.
- Acortar
los ciclos de mejora genética. No hay que esperar que pase el periodo
juvenil del árbol para ver resultados.
- Producción de
haploides. Cruzamientos o cultivo de polen (anteras). Ventajas:
- Obtención rápida de homocigotos.
- Producción de híbridos (frutos puros).
Equipo necesario para el cultivo in vitro
-
Autoclave
- Cámara de flujo laminar
- Medio de cultivo
- Planta
- Cámara de cultivo
- Cámara de flujo laminar
- Medio de cultivo
- Planta
- Cámara de cultivo
-
Autoclave
Es donde se "esteriliza" todo lo que vamos a utilizar: agua,
algunos nutrientes, material, etc. No se pueden meter proteínas. Es como una
olla a presión, pero de mayor tamaño, donde se controla la presión y la
temperatura (hasta 120º).
- Cámara
de flujo laminar
Es donde se realizan todas las manipulaciones con la planta. Es un
habitáculo con un operario en un ambiente estéril. Se usan rayos ultravioletas
para esterilizar el aire.
- Medio
de cultivo
Agua y nutrientes (hormonas) en un tubo de ensayo, que se tapa con un
tapón. Dependiendo del material que se va a propagar, el tubo se pone vertical
o un poco inclinado.
- Planta
El material vegetal de partida puede ser del campo, pero esto conlleva
un alto riesgo de enfermedades y contaminación, aunque se lave mucho y bien. Lo
más corriente es utilizar brotes que crecen en condiciones controlada para que
halla menos infecciones.
- Cámara
de cultivo
La cámara de cultivo es una habitación de dimensiones muy variables, en
la que se controlan las condiciones de luz, temperatura, humedad, variación
día-noche, etc..
Condiciones del cultivo in vitro
- En
la cámara de flujo laminar no puede entrar material contaminado. El
problema más importante en todo el proceso del cultivo in vitro son las
contaminaciones.
- En
el autoclave no se pueden meter determinadas sustancias, como vitaminas,
antibióticos, ácido giberélico, sacarosa, encimas, extractos vegetales,
etc., ni tampoco recipientes que no soporten altas temperaturas.
- El
vidrio ha de ser de muy buena calidad para que no suministre a las medias
sustancias contaminantes para la planta. Normalmente se prepara el medio y
se filtra directamente. El problema es que se absorben en el filtro
determinadas sustancias.
- Los
reguladores de crecimiento (hormonas) son imprescindibles, ya que sin
ellos no se puede hacer el medio de cultivo.
- El pH ideal es 6, pero
puede oscilar entre 5,5 y 6,5.
- Se necesita agar y
medio sólido 0,6-0,9%.
- El
medio de cultivo realmente sólo tiene que llevar agua, fuente de energía
(azúcares) y reguladores de crecimiento.
- El
medio de cultivo es secreto, y se pueden tardar dos años en prepararlo.
- En
la cámara de cultivo se aplican cantidades variables de luz (16-20 horas).
También existen plantas que se desarrollan en la oscuridad. Las
temperaturas también varían. Lo normal son 22-26ºC, aunque en ocasiones se
exigen fríos de 4ºC y también 28-30ºC para plantas tropicales.
- Igualmente,
en el éxito de esta técnica de propagación también influyen determinadas
características de la planta, como el tipo, genética e incluso el tipo de
implante, parte más juvenil o más adulta.
- En
cuanto a los recipientes, deben permitir el intercambio de gases, pero
evitar la pérdida de agua, lo que provocaría un aumento de la
concentración de sales, y por tanto la muerte de la planta. De ahí la
importancia del cierre.
Subcultivos o replicado
Cuando sembramos micro estaquillas en cultivo in vitro, no nos interesa
que se emitan raíces ni hojas, sino que se produzca una proliferación
(crecimiento) para obtener nuevas micro estaquillas. Son lo que se denominan
subcultivos.
No se pueden hacer infinitamente ya que se agota el material vegetal;
tan sólo se hace 8-10 veces.
Ocurre
entonces lo siguiente:
- El
medio nutritivo se agota y se seca.
- El material vegetal ocupa todo el tubo.
- Se produce un cambio de olor en el medio (sustancias tóxicas).
- El medio se hace líquido.
- El material vegetal ocupa todo el tubo.
- Se produce un cambio de olor en el medio (sustancias tóxicas).
- El medio se hace líquido.
Fases del cultivo de meristemos
1. Toma
un ápice meristemático (0,2-1 mm).
2. Siembra en el medio del tubo.
3. Fase de proliferación: crecimiento de brotes. Subcultivos.
4. Fase de enraizamiento (cambiar el medio).
5. Primera fase de aclimatación. Es muy importante el que la planta pueda llegar o no al campo. Invernaderos, bolsas de plástico, bandejas de vidrio, etc.
6. Segunda fase de aclimatación. Siempre en invernadero.
7. Plantación en el campo.
2. Siembra en el medio del tubo.
3. Fase de proliferación: crecimiento de brotes. Subcultivos.
4. Fase de enraizamiento (cambiar el medio).
5. Primera fase de aclimatación. Es muy importante el que la planta pueda llegar o no al campo. Invernaderos, bolsas de plástico, bandejas de vidrio, etc.
6. Segunda fase de aclimatación. Siempre en invernadero.
7. Plantación en el campo.
Fases del cultivo de embriones
Se
utiliza mucho en manzano.
1. Se
desinfecta el fruto en alcohol. Se flamea.
2. Se coge el embrión de la semilla.
3. Se inocula en el tubo.
4. A las 1-2 semanas, la planta está más o menos reconocible.
5. Se deja crecer y se pasa por las fases de aclimatación.
2. Se coge el embrión de la semilla.
3. Se inocula en el tubo.
4. A las 1-2 semanas, la planta está más o menos reconocible.
5. Se deja crecer y se pasa por las fases de aclimatación.
Micro propagación
Se parte
de una yema, de bráctea o axilar.
Se
empieza a desarrollar en el medio de cultivo.
Entre la fase de proliferación y de enraizamiento hay muchos subcultivos
(para obtener más plantas).
El número
de subcultivos depende del material vegetal.
Ejemplo
de micropropagación de Kiwi:
- Se
parte de un trozo de tallo.
- Al cabo de 4 semanas se obtiene una yema y crece un brote.
- En la fase de proliferación intentamos obtener gran cantidad de brotes.
- Sacamos microestaquillas del primer brote, haciendo subcultivos cada 6-8 semanas hasta llenar el vidrio.
- Al aumentar la concentración de auxinas se obtienen plantas enraizadas.
- Puede hacerse de forma industrial y la fase de enraizamiento se hace en vivo.
- Al cabo de 4 semanas se obtiene una yema y crece un brote.
- En la fase de proliferación intentamos obtener gran cantidad de brotes.
- Sacamos microestaquillas del primer brote, haciendo subcultivos cada 6-8 semanas hasta llenar el vidrio.
- Al aumentar la concentración de auxinas se obtienen plantas enraizadas.
- Puede hacerse de forma industrial y la fase de enraizamiento se hace en vivo.
Cultivo de callo in vitro
Se parte de un trozo de hoja o de tallo; bien de una planta madre de
maceta o de una planta que viene de cultivo in vitro.
El medio
puede ser sólido o líquido.
Se forma entonces una estructura de callo, de la que parten brotes, o
también pro embriones, que al unirse forman una estructura similar al embrión.
A partir
de entonces se desarrolla normalmente.
Obtención de plantas haploides
Normalmente se trabaja con la antera en su totalidad, no con granos de
polen en particular.
De una yema de flor se coge una antera antes de que se abra y se hace un
cultivo; bien por embriogénesis u organogénesis.
- Embriogénesis: se
forman células (poli embriones).
- Organogénesis:
se forma una estructura de callo que puede venir o bien de tejidos de la
antera (diploide), o bien del grano de polen (haploide).
METODOLOGIA
En este proyecto se realiza la metodología teórica y la práctica.
TEORICA:
Revisión bibliográfica
Diseño del procedimiento
Etapas para desarrollar el cultivo
Ejecutar cultivo con la planta de fique
PRACTICA:
Corte meristemo del fique
La producción de la planta de fique
La importancia para la agronomía
CRONOGRAMA
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TEMAS
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SEMANA1
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SEMANA2
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SEMANA3
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SEMANA4
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SEMANA5
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Revisión bibliográfica
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Exposición
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x
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Diseño para la producción de fique
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x
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Cortes
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x
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Documento
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RESULTADO:
Lo que
se espera en estés proyecto es presentar un documento que nos permita
evidenciar la importancia de realizar cultivos in vitro y la aplicación para
poder producir hijuelos de fique a partir de un corte meristematico, sin
presencia de contaminantes.
BINH, T. L., et al., Rapid propagation of agave by in
vitrotissue culture. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. Págs.
67-70, 1990.
Barthelemy R, Dawson J, Lee A (1977) Técnicas para el
laboratorio de biología.
Azcón-Bieto, J; Talón, M. 2008.
Fundamentos de Fisiología Vegetal. 2 ed. McGraw
Hill Interamericana. España. p. 537-556.
Azofeifa, A. 2009. Problemas de
oxidación y oscurecimiento de explantes cultivados in vitro. Agronomía
Mesoamericana 20:153-175.
[1] Davies R.D. et al, (1980). Proceeding of the Fourth John Innes Symposium the
Plant Genoma and Second.
[2] Strasburger, E. (1981) Tratado de Botánica.
Editorial Marín
[3] Barthelemy R, Dawson J, Lee A (1977) Técnicas
para el laboratorio de biología. Campania
Editorial Continenta
[4] BINH, T. L., et al., Rapid propagation of agave by in vitrotissue
culture. Plant Cell, Tissue and Organ Culture.
págs. 67-70, 1990.
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